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REMCB 39 (1): 51-61, 2018
Papallacta (Figuero y Rafael 2011. Figuero et al. 2012a,
b, Figuero y Rafael 2013). En los últimos años, con el n
de conocer la diversidad del género Drosophila en los
maravillosos páramos carchenses formados por pajonal,
frailejones y pequeños remanentes de bosque andino, se
realizaron capturas de drosólas donde se han descubier-
to dos especies nuevas del género y un nuevo registro de
Parascaptomiza clavifera.
MATERIALES Y MÉTODOS
Área de estudio.- Los tres primeros lugares de captu-
ra se ubican en la Reserva Ecológica El Ángel: 1) Pá-
ramo de El Ángel sector el Voladero (00°40’ 29.7’’N
077°52’46.7’’W, a una altitud de 3 705 msnm); 2) Un
bosque dominado por árboles del género Polylepis y
Gynoxis (00°47’56.8’N 077°54’59.9’’W, a una altitud de
3 938 msnm); 3) Parche de vegetación arbustiva en me-
dio de un bosque dominado por Espeletia (00°47’22.1’’N
077°54’03.2’’W, a una altitud de 3 762 msnm). El cuarto
está ubicado en la Estación Biológica Guanderas - Jatun
Sacha (00°35’05.5’’N 077°42’51.6’’W, a una altitud de 3
286 msnm, en un bosque nublado montano). Y el quinto
en el Bosque nublado de Jucal vía Chical zona norocci-
dental de la provincia (00°48’19.8’’N 078’00’10.8’’W, a
una altitud de 3 370 msnm). Además, se aspiraron moscas
directamente desde las ores del frailejón (Espeletia pyc-
nophylla Cuatrecasas) (00°46’58.7’’N 077°53’26.6’’W),
a una altitud de 3 659 msnm.
Fase de campo.- Se realizó una recolección de drosólas
en julio del 2016. En cada lugar se colocaron 15 trampas,
a diez metros de distancia y a un metro de altura desde
la base del árbol. Las trampas fueron fabricadas con
botellas plásticas recicladas de 500 ml, con pequeños
agujeros en la parte inferior para facilitar el ingreso de
los drosophilideos y una ventana para introducir los
trozos de banano fermentado con levadura. Además, se
colocaron láminas plásticas en la parte superior de cada
botella para protegerlas de la lluvia.
La recolección de los individuos se realizó luego de
15 días desde la puesta de las trampas. Los individuos
vivos fueron capturados con un aspirador entomológico,
y colocados en tubos de ensayo de 30 ml con 5 ml de
medio de cultivo estándar banano levadura (Rafael et
al. 2000). Los individuos muertos fueron recolectados
y preservados en tubos de microcentrífuga conteniendo
una solución 95% de etanol (diluido al 75%) y 5% de
glicerol puro (Márquez-Luna 2005). También, los cebos
utilizados en el campo fueron recogidos y guardados en
frascos de vidrio de 200 ml, con el objetivo de permitir
que los huevos depositados por las hembras visitantes
puedan culminar su ciclo biológico en el laboratorio y
posteriormente analizarlos.
Fase de laboratorio.- Las hembras vivas fueron
separadas de los machos y aisladas, una por una, en un
tubo con medio de cultivo, para fundar isolíneas con
cada una de ellas y esperar la descendencia F1. Luego
se procedió a fotograar a los machos vivos y a las
hembras muertas. Después se extrajo la terminalia de
cada individuo y fueron colocados en tubos con KOH
al 10 % y hervidos por 10 minutos, para disectarlos y
nalmente colocarlos en glicerol al 60 % a las hembras
y glicerol al 100 % a los machos. También se analizaron
los individuos machos nacidos de los cebos.
La identicación taxonómica se hizo mediante el análisis
de los caracteres morfológicos externos y de la genitalia.
Para la determinación de las especies se analizó y comparó
la genitalia con la literatura disponible y especímenes
del museo QCAZ-I. Tanto la morfología externa como
la genitalia de cada individuo fueron fotograadas con
un microscopio óptico y estéreo microscopio (Zeiss;
Discovery V8).
Las descripciones de las especies nuevas fueron hechas
siguiendo el sistema propuesto por Bächli et al. (2004).
Las mediciones de las estructuras fueron realizadas usan-
do el software Axio Vision V4. Para las ilustraciones se
utilizó un microscopio (Zeiss-46 70 86) con cámara lúci-
da incorporada (Zeiss-47 46 20 9900).
Los holotipos y paratipos de las nuevas especies fue-
ron depositados en el Museo de Zoología, en la sección
Invertebrados de la Ponticia Universidad Católica del
Ecuador, Quito (QCAZ-I).
RESULTADOS
Drosophila carchensis sp. nov.
Figuras 1 A-D, 2 A-F y 3 A-B
Material tipo: Holotipo ♂ (disectado, genitalia en mi-
crotubo, montado en seco), Ecuador, Carchi, Reserva
Ecológica El Ángel, 00°47’22.1’’N 077°54’03.2’’W,
3762 m, jul. 2016, A. Peñael col., A. Peñael & V. Ra-
fael det. (QCAZ-I 251017). Alotipo ♀ (disectado, geni-
talia en microtubo, montado en seco), Ecuador, Carchi,
Reserva Ecológica El Ángel, mismos datos que el holo-
tipo, (QCAZ-I 251018).
Paratipos: 2 ♂♂ y 6 ♀♀ (disectados, genitalia en mi-
crotubo, montados en seco, descendientes de isolínea
F1), Ecuador, Carchi, Reserva Ecológica El Ángel, mis-
mos datos que el holotipo, (QCAZ-I 251019-251020.
251028-251033). 5♂♂ y 2 ♀♀ (disectados, genitalia
en microtubo, montados en seco), Ecuador, Carchi, Ju-
cal, 00°48’19.8’’N 078’00’10.8’’W, 3370 m, jul. 2016,
A. Peñael col., A. Peñael & V. Rafael det. (QCAZ-I